Blodudstrig præparation: Hvorfor steril vand fejler og korrekte farveløsninger er essentielle

Sterilt vand kan ikke bruges til at præparere blodudstrig til mikroskopi. Det mangler de fysikokemiske egenskaber til at bevare cellulaer morfologi eller muliggøre farvning.

Hvorfor vand fejler

• Osmotisk lyse: Hypotonisk → erythrocyter svuller og brister (hæmolyse); leukocyter forvrænges.
• Ingen fixation: Proteiner koagulerer dårligt; celler vaskes af glaspladen.
• Ingen farveaffinitet: Romanowsky-farver (Wright-Giemsa, Diff-Quik) kræver methanol-fixering og bufferet pH (6,8–7,2) for eosinat/azur kompleks-dannelse.

Korrekt procedure

1. Glasplade: Ren, fedtfri.
2. Dråbe: Lille bloddråbe (frisk, antikoaguleret eller kapillær).
3. Udstrig: Skyderglasplade ved 30–45° → monolayer fjerret kant.
4. Lufttørk: Hurtig, fuldstændig (kritisk).
5. Fixér: Absolut methanol, 1–3 min (eller methanol i farve).
6. Farv: Romanowsky-type (Giemsa, Wright, Leishman) efter protokol.
7. Skyl/Tørk: Bufferet vand/pH 6,8 buffer; lodret afdrynning.

Vigtige buffers

Fosfatbuffer (pH 6,8–7,2) opretholder farveløselighed og cellulaer ladning for differential farvning (basofil vs. acidofil).

Vand alene ødelægger præparatet. Korrekt teknik sikrer diagnostisk-kvalitets udstrig til CBC differential, malaria, parasitter, morfologi.